时间: 下载该word文档
引物设计原则(汇总)
普通引物设计(适用于从载体上扩增模板) :
1. 普通引物长度一般在 20-30bp 之间,常用 24-28bp 左右以保证基因特异性;
2. 下载基因序列到 Vector NTI ; 3. 找到所需安装载体序列; 4. 将基因序列的 CDS高亮标记; 5. 寻找载体序列中常用酶切位点,一般为 EcoRI、 BamHI 、 HindIII 、XhoI 等等,比对检测
基因序列中是否有这些位点,有的话舍弃,最后选择两个酶切位点,最好离得远一点, 并且 最好
buffer 用一样的。酶切位点一般是 6bp 的回文序列;
6. 从基因 ATG开始往后选择 10-20bp均可(我的习惯是 27bp-6bp酶切位点 -2bp保护碱基
-xbp 补齐序列),但最好保证最后两个是 G 或者 C,以减少错配率;
7. 将上游酶切位点序列补在 ATG 前方,并根据载体对框情况补足两者之间的空缺,再根据
序列的 GC 含量和 TM 值在酶切位点前补足保护碱基,以保证 GC 和 AT 的含量不能过高。 注意,所有的补齐不能用到终止密码子;
8. 检测上游序列的结构情况,理论上不要太多二级结构以及 3'端匹配即可;不过重复的序
列也不能太多,以免移码;
9. 从下游终止密码子开始向前选择 10-20bp 均可,但最好保证最后两个是 G或者 C,以减少
错配率;
10. 选择 complementary sequence,在 N 端补齐下游酶切位点,如果 tag 在 C 端(即下游) , 则在第 9 点中应该从终止密码子前开始选择 (即舍弃终止密码子) ,并且下游引物也要对框, 如果 tag 在 N 端,则下游引物不需要对框,只要在 N 端加上下游酶切位点,再根据情况加 上 2 个保护碱基,然后检测二级结构,原则上 多,以免移码;
11. 将设计好的上下游引物放在一起检测二级结构,原则上 3'端部匹配即可。不过重复的
3 '端部匹配即可。不过重复的序列也不能太
序列也不能太多,以免移码;
12. 最后在 NCBI 的 primer Blast 网站上比对引物序列,看是否基因特异性的。
2011 年 10 月 18 日
左洁
1. 引物的长度一般为 15-30 bp ,常用的是 18-27 bp ,但不应大于 38,因为过 长会导致其延伸温度大于 74℃,不适于 Taq DNA聚合酶进行反应。
2. 引物序列在模板内应当没有相似性较高,尤其是 3'端相似性较高的序列, 否则容易导致错配。引物 3'端出现 3个以上的连续碱基,如 GGG或 CCC,也会
使错误引发机率增加。
3. 引物 3'端的末位碱基对 Taq 酶的 DNA合成效率有较大的影响。不同的末位 碱基在错配位置导致不同的扩增效率, 末位碱基为 A 的错配效率明显高于其他 3 个碱 基,因此应当避免在引物的 3'端使用碱基 A。另外, 引物二聚体或发夹结 构也可能导致 PCR反应失败。 5'端序列对 PCR影响不太大,因此常用来引进修 饰位